Cómo citar
Descargas
Métricas Alternativas
Dimensions
Resumen
Existe información limitada sobre la inmunidad innata en triatominos contra Trypanosoma rangeli, un parásito humano, infeccioso y no patogénico, y T. cruzi, el agente casal de la enfermedad de Chagas. Sin embargo, esta información podría ayudar a identificar los factores que afectan la transmisión de los parásitos. Por lo tanto, nuestro objetivo fue abordar este vacío mediante el estudio de la actividad tripanolítica in vitro en la hemolinfa de insectos no infectados con T. rangeli o T. cruzi. Se examinaron ocho especies de triatominos, incluyendo Rhodnius prolixus, R. robustus, R. colombiensis, R. pallescens, R. pictipes, Triatoma dimidiata, T. maculata, and Panstrongylus geniculatus. La hemolinfa de las colonias de laboratorio de R. prolixus y R. robustus demostró una fuerte actividad tripanolítica contra algunos genotipos de T. rangeli y T. cruzi durante las primeras 14 h de incubación. Sin embargo, no se detectó actividad lítica a las 14 o 24 h usando hemolinfa de colonias de laboratorio de R. pallescens, R. pictipes, T. maculata y P. geniculatus, o de colonias de laboratorio o poblaciones silvestres de R. colombiensis y T. dimidiata. Este es el primer estudio comparativo de la actividad tripanolítica en la hemolinfa de diferentes especies de triatominos contra varios genotipos de T. rangeli y T. cruzi. Aunque las estructuras químicas de estos factores líticos, junto con los mecanismos que determinan su expresión en los insectos, no se han determinado completamente, su identificación permitirá nuestra comprensión de la inmunidad innata de los triatominos y su papel en la transmisión de los tripanosomas.
Citas
Alvarenga, N.J. & Bronfen, E. (1982). Incapacity of the evolution of Trypanosoma cruzi in the hemocele of triatomids. Mem Inst Oswaldo Cruz. 77(4): 431-6. Portuguese.
Azambuja, P., García, E.S., Waniek, P.J., Vieira, C.S., Figueiredo, M.B., Gonzalez, M.S., Mello, C.B., Castro, D.P., Ratcliffe, N.A. (2017). Rhodnius prolixus: From physiology by Wigglesworth to recent studies of immune system modulation by Trypanosoma cruzi and Trypanosoma rangeli. J Insect Physiol. 97: 45-65. Doi: 10.1016/j.jinsphys.2016.11.006
Baker, J.R., Miles, M.A., Godfrey, D.G., Barrett, T.V. (1978). Biochemical characterization of some species of Trypanosoma (Schizotrypanum) from bats (Microchiroptera). Am J Trop Med Hyg. 27(3): 483-91.
Beltrame-Botelho, I.T., Talavera-López, C., Andersson, B., Grisard, E.C., Stoco, P.H. (2016). A Comparative In Silico Study of the Antioxidant Defense Gene Repertoire of Distinct Lifestyle Trypanosomatid Species. Evol Bioinform Online. 12: 263-275.
Brehélin, M., Drift, L., Baud, L., Boemare, N. (1989). Insect haemolymph: Cooperation between humoral and cellular factors in Locusta migratoria. Insect Biochem. 19: 301-309.
Brisse, S., Verhoef, J., Tibayrenc, M. (2001). Characterisation of large and small subunit rRNA and mini-exon genes further support the distinction of six Trypanosoma cruzi lineages. Int J Parasitol. 31 (11): 1218-26. Doi: 10.1016/S0020-7519(01)00238-7
Buarque, D.S., Braz, G.R., Martins, R.M., Tanaka-Azevedo, A.M., Gomes, C.M., Oliveira, F.A., Schenkman, S., Tanaka, A.S. (2013). Differential expression profiles in the midgut of Triatoma infestans infected with Trypanosoma cruzi. PLoS Negl. Trop. Dis. 5: e61203.
Castro, D.P., Moraes, C.S., Gonzalez, M.S., Ratcliffe, N.A., Azambuja, P., Garcia, E.S. (2012). Trypanosoma cruzi immune response modulation decreases microbiota in Rhodnius prolixus gut and is crucial for parasite survival and development. PLoS One. 7: e36591.
Cerenius, L., Lee, B.L., Söderhäll, K. (2008). The proPO-system: Pros and cons for its role in invertebrate immunity. Trends Immunol. 29: 263-271. Doi: 10.1016/j.it.2008.02.009.
De Fuentes-Vicente, J.A., Cabrera-Bravo, M., Enríquez-Vara, J.N., Bucio-Torres, M.I., Gutiérrez-Cabrera, A.E., Vidal-López, D.G., Martínez-Ibarra, J.A., Salazar-Schettino, P.M., Córdoba-Aguilar, A. (2016). Relationships between altitude, triatomine (Triatoma dimidiata) immune response and virulence of Trypanosoma cruzi, the causal agent of Chagas’ disease. Med. Vet. Entomol. 31: 63-71.
De Stefani-Márquez, M.D., Rodrigues-Ottaiano, C., Mônica Oliveira, R., Pedrosa, A.L., Cabrine-Santos, M., Lages-Silva, E., Ramírez, L.E. (2006). Susceptibility of different triatomine species to Trypanosoma rangeli experimental infection. Vector Borne Zoonotic Dis. 6 (1): 50-56.
Figueiredo, M.B., Genta, F.A, Garcia, E.S., Azambuja, P. (2008). Lipid mediators and vector infection: Trypanosoma rangeli inhibits Rhodnius prolixus hemocyte phagocytosis by modulation of phospholipase A2 and PAF-cetylhydrolase activities. J Insect Physiol. 54: 1528-37.
Galvão, C. & Justi, S.A. (2015). An overview on the ecology of Triatominae (Hemiptera: Reduviidae). Acta Trop. 151: 116-25. Doi: 10.1016/j.actatropica.2015.06.006.
García, E.S., Machado, E.M., Azambuja, P. (2004a). Inhibition of hemocyte microaggregation reactions in Rhodnius prolixus larvae orally infected with Trypanosoma rangeli. Exp Parasitol. 107: 31-8.
García, E.S., Machado, E.M., Azambuja, P. (2004b). Effects of eicosanoid biosynthesis inhibitors on the prophenoloxidase-activating system and microaggregation reactions in the hemolymph of Rhodnius prolixus infected with Trypanosoma rangeli. J Insect Physiol. 50: 157-65.
Guhl, F. & Vallejo, G.A. (2003). Trypanosoma (Herpetosoma) rangeli Tejera, 1920: An updated review. Mem Inst Oswaldo Cruz. 98(4): 435-42.
Gurgel-Gonçalves, R., Ramalho, E.D., Duarte, M.A., Palma, A.R., Abad-Franch, F., Carranza, J.C., Cuba-Cuba, C.A. (2004). Enzootic transmission of Trypanosoma cruzi and T. rangeli in the Federal District of Brazil. Rev Inst Med Trop Sao Paulo. 46 (6):323-30.
Hoare, C.A. (1972). The trypanosomes of mammals: A zoological monograph. Oxford: Blackwell Scientific Publications. 749 p.p.
Kanost, M.R., Gorman, M.J. (2008). Phenoloxidases in insect immunity. In: Beckage,N. (Ed.), Insect Immunology. Academic Press/Elsevier, San Diego, p. 69-96.
López, L., Morales, G., Ursic, R., Wolff, M., Lowenberger, C. (2003). Isolation and characterization of a novel insect defensin from Rhodnius prolixus: A vector of Chagas disease. Insect Biochem. Mol. Biol. 33: 349-447.
Maia Da Silva, F., Junqueira, A.C., Campaner, M., Rodrigues, A.C., Crisante, G., Ramírez, L.E., Caballero, Z.C., Monteiro, F.A., Coura, J.R., Añez, N., Teixeira, M.M. (2007). Comparative phylogeography of Trypanosoma rangeli and Rhodnius (Hemiptera: Reduviidae) supports a long coexistence of parasite lineages and their sympatric vectors. Mol Ecol. 16 (16): 3361-73.
Marcili, A., Lima, L., Cavazzana, M., Junqueira, A.C., Veludo, H.H., Maia Da Silva, F., Campaner, M., Paiva, F., Nunes, V.L., Teixeira, M.M. (2009). A new genotype of Trypanosoma cruzi associated with bats evidenced by phylogenetic analyses using SSU rDNA, cytochrome b and Histone H2B genes and genotyping based on ITS1 rDNA. Parasitology. 136 (6): 641-55.
Mello, C.B., García, E.S., Ratcliffe, N.A., Azambuja, P. (1995). Trypanosoma cruzi and Trypanosoma rangeli: Interplay with hemolymph components of Rhodnius prolixus. J Invertebr Pathol. 65 (3): 261-8.
Mello, C.B., Azambuja, P., Garcia, E.S., Ratcliffe, N.A. (1996). Differential in vitro and in vivo behavior of three strains of Trypanosoma cruzi in the gut and hemolymph of Rhodnius prolixus. Exp. Parasitol. 82: 112-121.
Pereira ME, Andrade AF, Ribeiro JM. (1981). Lectins of distinct specificity in Rhodnius prolixus interact selectively with Trypanosoma cruzi. Science. 211: 597-600.
Pulido, X.C., Pérez, G., Vallejo, G.A. (2008). Preliminary characterization of a Rhodnius prolixus hemolymph trypanolytic protein, this being a determinant of Trypanosoma rangeli KP1(+) and KP1(-) subpopulations’ vectorial ability. Memorias do Instituto Oawaldo Cruz. 103 (2):172-179.
Salazar-Antón, F., Urrea, D.A., Guhl, F., Arévalo, C., Azofeifa G., Urbina A., Blandón-Naranjo, M., Sousa, O.E., Zeledón, R., Vallejo, G.A. (2009). Trypanosoma rangeli genotypes association with Rhodnius prolixus and R. pallescens allopatric distribution in Central America. Infection, Genetics and Evolution. 9: 1306-1310.
Salcedo-Porras, N. & Lowenberger, C. (2019). The innate immune system of kissing bugs, vectors of chagas disease. Dev Comp Immunol. 98: 119-128. Doi: 10.1016/j.dci.2019.04.007.
Sánchez, I.P., Pulido, X.C., Carranza, J.C., Triana, O., Vallejo, G.A. (2005). Inmunidad Natural de Rhodnius prolixus (Hemiptera: Reduviidae: Triatominae) frente a la infección con Trypanosoma (Herpetosoma) rangeli KP1(-) aislados de Rhodnius pallescens, R. colombiensis y R. ecuadoriensis. Revista de la Asociación Colombiana de Ciencias Biológicas. 17: 108-118.
Söderhäll, K. & Cerenius, L. (1998). Role of the prophenoloxidase-activating system ininvertebrates. Curr Opi. Immunol. 10: 23-28
Souto, R.P. & Zingales, B. (1993). Sensitive detection and strain classification of Trypanosoma cruzi by amplification of a ribosomal RNA sequence. Mol Biochem Parasitol. 62 (1): 45-52. Doi: /10.10160166-6851(93)90176-X
Souto, R.P., Fernandes, O., Macedo, A.M., Campbell, D.A., Zingales, B. (1996). DNA markers define two major phylogenetic lineages of Trypanosoma cruzi. Mol Biochem Parasitol. 83(2): 141-52. Doi: 10.1016/S0166-6851(96) 02755-7
Stoco, P.H., Wagner, G., Talavera-Lopez, C., Gerber, A., Zaha, A., Thompson, C.E., Bartholomeu, D.C., Lückemeyer, D.D., Bahia, D., Loreto, E., Prestes, E.B., Lima, F.M., Rodrigues-Luiz, G., Vallejo, G.A., Filho, J.F., Schenkman, S., Monteiro, K.M., Tyler, K.M., Almeida, L.G., Ortiz, M.F., Chiurillo, M.A., Moraes, M.H., Cunha Ode. L., Mendonça-Neto, R., Silva, R., Teixeira, S.M., Murta, S.M., Sincero, T.C., Mendes, T.A., Urmenyi, T.P., Silva, V.G., Da Rocha, W.D., Andersson, B., Romanha, A.J., Steindel, M., Vasconcelos, A.T., Grisard, E.C. (2014). Genome of the Avirulent Human-Infective Trypanosome-Trypanosoma rangeli. PLoS Negl. Trop. Dis. 8 (9): e3176. Doi: 10.1371/journal.pntd.0003176
Urrea, D.A., Carranza, J.C., Cuba-Cuba, C.A., Gurgel-Gonçalves, R., Guhl, F., Schofield, C.J., Triana O., Vallejo, G.A. (2005). Molecular characterisation of Trypanosoma rangeli strains isolated from Rhodnius ecuadoriensis in Perú, R. colombiensis in Colombia and R. pallescens in Panamá supports a co-evolutionary association between parasites and vectors. Infection, Genetics and Evolution. 5 (2): 123-129.
Urrea, D.A., Herrera, C.P., Falla, A., Carranza, J.C., Cuba-Cuba, C., Triana-Chávez, O., Grisard, E.C., Guhl, F., Vallejo, G.A. (2011). Sequence analysis of the splicedleader intergenic region (SL-IR) and random amplified polymorphic DNA (RAPD) of Trypanosoma rangeli strains isolated from Rhodnius ecuadoriensis, R. colombiensis, R. pallescens and R. prolixus suggests a degree of co-evolution between parasites and vectors. Acta Tropica. 120: 59-66.
Ursic-Bedoya, R.J., Nazzari, H., Cooper, D., Triana, O., Wolff, M., Lowenberger, C. (2008). Identification and characterization of two novel lysozymes from Rhodnius prolixus, a vector of Chagas disease. J. Insect. Physiol. 54: 593-603.
Ursic-Bedoya, R., Buchhop, J., Joy, J.B., Durvasula, R., Lowenberger, C. (2011). Prolixicin: A novel antimicrobial peptide isolated from Rhodnius prolixus with differential activity against bacteria and Trypanosoma cruzi. Insect. Mol. Biol. 20: 775-786.
Vallejo, G. A., Marinkelle, C. J., Guhl, F., de Sánchez, N. (1986). Mantenimiento en el laboratorio de Trypanosoma (Herpetosoma) rangeli Tejera, 1920. Revista de biología tropical. 34(1): 75-81.
Vallejo, G.A., Marinkelle, C.J., Guhl, F., de Sánchez, N. (1988). Behavior of the infection and morphologic differentiation of Trypanosoma cruzi and T. rangeli in the intestine of the vector Rhodnius prolixus. Rev Bras Biol. 48 (3): 577-87. Spanish.
Vallejo, G.A., Guhl, F., Carranza, J.C., Lozano, L.E., Sánchez, J.L., Jaramillo, J.C., Gualtero, D., Castañeda, N., Silva, J.C., Steindel, M. 2002. kDNA markers define two major Trypanosoma rangeli lineages in Latin-America. Acta Trop. 81(1): 77-82.
Vallejo, G.A., Suárez, Y., Olaya, J.L., Gutiérrez, S.A., Carranza, J.C. (2015). Trypanosoma rangeli: un protozoo infectivo y no patógeno para el humano que contribuye al entendimiento de la transmisión vectorial and la infección por Trypanosoma cruzi, agente causal de la Chagas’ disease. Rev. Acad. Col. Cienc. Exac. Fís. Nat. 39(150): 111-122.
Vieira, C.S., Waniek, P.J., Mattos, D.P., Castro, D.P., Mello, C.B., Ratcliffe, N.A., García, E.S., Azambuja, P. (2014). Humoral responses in Rhodnius prolixus: Bacterial feeding induces differential patterns of antibacterial activity and enhances mRNA levels of antimicrobial peptides in the midgut. Parasit Vectors. 7: 232. Doi:10.1186/1756-3305-7-232
Vieira, C.S., Mattos, D.P., Waniek, P.J., Santangelo, J.M., Figueiredo, M.B., Gumiel, M., da Mota, F.F., Castro, D.P., Garcia, E.S., Azambuja, P. (2015). Rhodnius prolixus interaction with Trypanosoma rangeli: Modulation of the immune system and microbiota population. Parasit Vectors. 8: 135. Doi: 10.1186/s13071-015-0736-2
Vieira, C.S., Waniek, P.J., Castro, D.P., Mattos, D.P., Moreira, O.C., Azambuja, P. (2016). Impact of Trypanosoma cruzi on antimicrobial peptide gene expression and activity in the fat body and midgut of Rhodnius prolixus. Parasit.Vectors. 9: 119. Doi: 10.1186/s13071-016-1398-4
Villa, L.M., Guhl, F., Zabala, D., Ramírez, J.D., Urrea, D.A., Hernández, D.C., Cucunubá, Z., Montilla, M., Carranza, J.C., Rueda, K., Trujillo, J.E., Vallejo, G.A. (2013). The identification of two Trypanosoma cruzi I genotypes from domestic and sylvatic transmission cycles in Colombia based on a single polymerase chain reaction amplification of the splicedleader intergenic region. Mem Inst Oswaldo Cruz. 108 (7): 932-5. Doi: 10.1590/0074-0276130201
Walters, J. & Ratcliffe, N.A. (1983). Studies on the in vivo cellular reactions of insects: Fate of pathogenic and non-pathogenic bacteria in Galleria mellonellanodules. J Insect Physio. 29:417-424. Doi: 10.1016/0022-1910(83)90069-0
Whitten, M., Sun, F., Tew, I., Schaub, G., Soukou, C., Nappi, A., Ratcliffe, N. (2007). Differential modulation of Rhodnius prolixus nitric oxide activities following challenge with Trypanosoma rangeli, Trypanosoma cruzi and bacterial cell wall components. Insect Biochem. Molec. Biol. 37: 440-452.
Zingales, B., Andrade, S.G., Briones, M.R., Campbell, D.A., Chiari, E., Fernandes, O., Guhl, F., Lages-Silva, E., Macedo, A.M., Machado, C.R., Miles, M.A., Romanha, A.J., Sturm, N.R., Tibayrenc, M., Schijman, A.G. (2009). Second Satellite Meeting. A new consensus for Trypanosoma cruzi intraspecific nomenclature: Second revision meeting recommends TcI to TcVI. Mem Inst Oswaldo Cruz. 104 (7): 1051-4.
Zingales, B., Miles, M.A., Campbell, D.A., Tibayrenc, M., Macedo, A.M., Teixeira, M.M., Schijman, A.G., Llewellyn, M.S., Lages-Silva, E., Machado, C.R., Andrade, S.G., Sturm, N.R. (2012). The revised Trypanosoma cruzi subspecific nomenclature: Rationale, epidemiological relevance and research applications. Infect Genet Evol. 12 (2): 240-53. Doi:10.1016/j.meegid.2011.12.009
Declaración de originalidad y cesión de derechos de autor
Los autores declaran:
- Los datos y materiales de referencia publicados han sido debidamente identificados con sus respectivos créditos y han sido incluidos en las notas bibliográficas y citas que así se han identificado y que de ser requerido, cuento con todas las liberaciones y permisos de cualquier material con derechos de autor.
- Todo el material presentado está libre de derechos de autor y acepto plena responsabilidad legal por cualquier reclamo legal relacionado con la propiedad intelectual con derechos de autor, exonerando completamente de responsabilidad a la Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales.
- Este trabajo es inédito y no será enviado a ninguna otra revista mientras se espera la decisión editorial de esta revista. Declaro que no hay ningún conflicto de intereses en este manuscrito.
- En caso de publicación de este artículo, todos los derechos de autor son transferidos a la Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, por lo que no puede ser reproducido de ninguna forma sin el permiso expreso de la misma.
- Mediante este documento, si el artículo es aceptado para publicación por la Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, la Revista asume el derecho de editar y publicar los artículos en índices o bases de datos nacionales e internacionales para académicos y uso científico en formato papel, electrónico, CD-ROM, internet ya sea del texto completo o cualquier otra forma conocida conocida o por conocer y no comercial, respetando los derechos de los autores.
Transferencia de derechos de autor
En caso de que el artículo sea aprobado para su publicación, el autor principal en representación de sí mismo y sus coautores o el autor principal y sus coautores deberán ceder los derechos de autor del artículo correspondiente a la Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales, excepto en los siguientes casos:
Los autores y coautores se reservan el derecho de revisar, adaptar, preparar trabajos derivados, presentaciones orales y distribución a algunos colegas de reimpresiones de su propio trabajo publicado, si se otorga el crédito correspondiente a la Revista de la Academia Colombiana de Ciencias. Exactas, Físicas y Naturales. También está permitido publicar el título de la obra, resumen, tablas y figuras de la obra en los sitios web correspondientes de los autores o sus empleadores, dando también crédito a la Revista.
Si el trabajo se ha realizado bajo contrato, el empleador del autor tiene el derecho de revisar, adaptar, preparar trabajos derivados, reproducir o distribuir en papel el trabajo publicado, de manera segura y para uso exclusivo de sus empleados.
Si la Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales fuera solicitada por un tercero para el uso, impresión o publicación específica de artículos ya publicados, la Revista debe obtener el permiso expreso del autor y coautores de la trabajo o del empleador excepto para uso en aulas, bibliotecas o reimpreso en un trabajo colectivo. La Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales se reserva el posible uso en su portada de figuras entregadas con los manuscritos.
La Revista de la Academia Colombiana de Ciencias Exactas, Físicas y Naturales no puede reclamar ningún otro derecho que no sea el de autor.